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如何正確的凍存細(xì)胞
更新時間:2015-09-07   點擊次數(shù):1441次

細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一?,F(xiàn)在我們就來講講如何正確的凍存細(xì)胞:

一、材料

(一)儀器   1. 凈化工作臺   2. 離心機   3. 恒溫水浴箱   4. 冰箱(4℃、-20℃、-70℃)   5. 倒置相差顯微鏡   6. 培養(yǎng)箱   7. 液氮冰箱

(二)玻璃器皿   1. 吸管(彎頭、直頭)   2. 培養(yǎng)瓶   3. 玻璃瓶(250ml、100ml)   4. 廢液缸

(三)塑料器皿   1. 吸頭   2. 槍頭   3. 膠塞   4. 移液管(10ml)   5. 15ml離心管   6. 凍存管(1~2ml)

(四)其他物品   1. 微量加樣槍   2. 紅血球計數(shù)板   3. 記號筆   4. 醫(yī)用橡皮膏   5. 移液槍

(五)試劑   1. D-Hanks液   2. 小牛血清   3. 培養(yǎng)液   4. 雙抗(青霉素、鏈霉素)   5. 胰蛋白酶(0.08%)   6. 1NHCl   7. 7.4%NaHCO3   8. DMSO(分析純)或無色新鮮甘油
二、操作步驟

(一)細(xì)胞凍存 

1. 配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養(yǎng)液;

2. 取對數(shù)生長期的細(xì)胞,用胰蛋白酶把單層生長的細(xì)胞消化下來,懸浮生長的細(xì)胞則直接將細(xì)胞移至15ml離心管中、;

3. 離心1000rpm,5min;

4. 去除胰蛋白酶及舊的培養(yǎng)液,加入適量配制好的凍存培養(yǎng)液,用吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻,計數(shù),調(diào)節(jié)凍存液中細(xì)胞的zui終密度為5×106/ml~1×107/ml;

5. 將細(xì)胞分裝入凍存管中,每管1~1.5 ml;

6. 在凍存管上標(biāo)明細(xì)胞的名稱,凍存時間及操作者;

7. 凍存:標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/ min;當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/   min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細(xì)胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ,然后放入-70℃冰箱中**,取出凍存管,移入液氮容器內(nèi)。

(二) 細(xì)胞復(fù)蘇

1. 從液氮容器中取出凍存管,直接浸入37℃溫水中,并不時搖動令其盡快融化。

2. 從37℃水浴中取出凍存管,打開蓋子,用吸管吸出細(xì)胞懸液,加到離心管并滴加10倍以上培養(yǎng)液,混勻;

3. 離心, 1000rpm,5min;

4. 棄去上清液,加入含10%小牛血清培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,計數(shù),調(diào)整細(xì)胞密度,接種培養(yǎng)瓶,37℃培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng);

5. 次日更換一次培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)。

三、注意事項

1.從增殖期到形成致密的單層細(xì)胞以前的培養(yǎng)細(xì)胞都可以用于凍存,但為對數(shù)生長期細(xì)胞。在凍存前一天換一次培養(yǎng)液;   

2.將凍存管放入液氮容器或從中取出時,要做好防護(hù)工作,以免凍傷;   

3.凍存和復(fù)蘇用新配制的培養(yǎng)液。

 

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